백혈병에서 통제되지 않은 확장을 겪는 미성숙 또는 비정상 세포는 백혈구의 과잉생산을 초래하고, 충분한 적혈구와 혈소판이 생성되지 못하도록 하는 경우도 있습니다. 급성 백혈병의 경우 세포가 여전히 증식중이지만 최종 분화로 이동하지 않은 단계에서 정상적인 세포 분화 경로가 차단됩니다. 2018 GLOBOCAN 조사에 따르면 전 세계적으로 백혈병 환자가 증가하고 있습니다. 신규 등록된 백혈병 환자는 437,033명으로 전세계 발병률은 5.2, 사망률은 3.5(100,000당 ASR)를 기록했습니다.1 골수에 있는 전구세포에 따라 백혈병은 림프구성 또는 골수구성으로 구분됩니다. 림프구성(림프 모세포) 백혈병은 T 또는 B 림프구성 선조에서 발생하는 반면 비림프구성 또는 골수성 백혈병은 적혈구, 과립구, 단핵구, 또는 혈소판의 선조로부터 발생합니다.1
백혈병의 원인?
백혈병은 골수에 있는 림프구 또는 골수 선조의 유전적 및 대사적 변화로 발생합니다. 백혈병과 관련한 환경 및 생활습관 위험 요소에는 흡연, 실내 및 실외 대기 오염, 방사선 및 특정 화학물질 노출, 방사선 치료, 화학요법 및 다운증후군 등의 유전질환이 포함됩니다.2
백혈병 유형
백혈병은 백혈병 세포의 증식속도에 따라 급성 또는 만성으로 분류됩니다. 백혈병에는 네 가지 주요 유형이 있습니다. 우세한 세포 계통에 따라 만성/급성 골수성 백혈병(CML 및 AML), 만성/급성 림프구성 백혈병(CLL, ALL)로 나뉩니다.3 미국에서 암 및 백혈병 발병 건수가 증가하고 있습니다. 20년 동안(1998년~2018년) CLL의 경우 187 %, AML의 경우 108 %, CML의 경우 96 %, ALL의 경우 92 % 증가를 보이며 모든 유형의 백혈병 건수가 증가했습니다. 1,4
백혈병은 어떻게 진단되나요?
백혈병은 복잡한 다인성 질환이며 백혈병 진단을 위해서는 증상의 검토, 신체검사, 혈액검사, 골수 생검, 뇌척수액(CSF) 평가, 방사선, 유전자 검사를 포함한 여러 분야의 검사가 필요합니다. 유세포분석은 백혈병 진단에 필수적인 중요한 도구라는 점이 입증되었습니다.
ZAP-70및 CD38와 같은 특정 marker를 사용한 유세포 분석을 통해 말초 백혈병의 세포표현형을 분석하여 백혈병 유형을 결정할 수도 있습니다.5 수많은 mononuclear cell 또는 비정형 침윤을 나타내는 뇌척수액(CFS)의 유세포 분석은 백혈병의 골수 외 확산과 CNS와의 관련성을 나타냅니다.5,6
백혈병을 위한 유세포 분석 기반 assay
유세포 분석은 질병의 진단 및 모니터링에서 귀중한 tool로 보고되고 있습니다.5
모세포 population 찾기
유세포 분석은 골수성 및 림프성 모세포를 구분하기 위한 일반적인 방법을 제공합니다.5
- 모세포 또는 미성숙세포 식별: SSC dot plot에서 CD34의 양성 발현과 CD45(CD45 low) 의 강도가 낮은 것으로 보통 식별되는 미성숙 세포 또는 모세포
- 비정상적인 모세포: 미성숙 세포에서 비정상적인 항원의 발현은 백혈병 가능성에 대한 추가 조사가 필요하다는 것을 의미합니다. 이러한 비정상적인 상태에는 arrested 성숙, 다른 계통의 항원 발현 (예: 골수 세포상의 CD19, CD7 림프 마커)7, 항원의 asynchronous 발현 (예: CD34 모세포에서 CD15 성숙 호중구 marker 발현) 7, 정상 항원 발현의 비정상적 강도 (예: T-ALL에서 낮은 CD3 발현, B-ALL에서 CD20 발현이 저조하거나, 발현되지 않음)이 포함됩니다.5
백혈병 확인: 급성 백혈병
항상성 조건에서 골수 또는 말초 혈액의 모세포 수가 cell의 5% 미만입니다. 모세포 수의 증가는 우려할 만한 사안으로 추가적인 조사가 필요합니다. AML에서 모세포의 수와 표현형 차이가 관찰될 수 있습니다.
만성림프구성 백혈병 진단
CLL 진단은 형태학적 진단과 면역 표현형에 의존하고 있습니다. WHO의 진단 기준에 따르면 전형적인 CLL의 면역 표현형은 CD20 발현은 약하며 동시에 neoplastic B cell에서 CD5, CD19, CD23의 공동 발현이 나타나는 것으로 입증했습니다(3개월 동안 말초 혈액에서 5,000개의 circulating neoblasts/mL 수로 계산) .8 CD5, CD19, CD23, 약한 CD20 및 면역 글로불린 kappa/lambda 등의 marker는 일상적인 진단에서 사용되며 screening panel에서 필요한 것으로 간주됩니다. Neoplastic B cell을 더욱 잘 특성화하기 위한 정보를 제공하거나 약한 CD79b, CD81 또는 CD38, CD45와 같은 예후와 관련한 가치가 있기 때문에 다른 marker도 권장됩니다.8
만성 백혈병에서 잔류 질환 모니터링
유세포 분석은 만성 백혈병에서 잔류 질환을 측정할 수 있는 민감도가 높은 방법으로 보고되었습니다. 순차적인 gating 전략을 사용하면 CD5+, CD19+ CLL와 같은 multiple marker를 동시에 측정할 수 있습니다. 정상세포와 neoplastic 세포 간 marker .발현도 구별할 수 있습니다.8
골수성 모세포와 림프성 모세포의 구분
백혈병의 면역학적 특성에 대한 WHO및 유럽의 분류기준에서는 유세포 분석을 통해 백혈병 유형을 구분하는데 사용할 수 있는 특정 lineage marker를 제공하고 있습니다. 8 Myeloid blasts는 cytoplasmic myeloperoxidase (cyMPO) 및CD117 에 양성인 반면 lymphoid blasts 는 cytoplasmic CD79a (cyCD79a) 또는 cytoplasmic CD3 양성으로 확인할 수 있습니다.7
백혈병 sub-grouping
백혈병 sub-grouping에 사용되는 유세포 분석 panel은 조사대상 cell lineage에 따라 달라집니다.7
- B cell lineage 이상: To investigate B cell lineage을 조사하기 위해 CD5, CD10, CD19, CD20, CD45 및 immunoglobulin kappa, lambda를 결합한 항체 panel이 사용됩니다.8,9
- T cell lineage 및 NK cell 이상: T cells 및 NK cells은 림프증식성 질환의 15%를 차지합니다. T cell 및NK cell 항원 발현에 중복이 있습니다. T/NK cell neoplasms을 조사하기 위해 CD2, CD3, CD4, CD5, CD7, CD8이 포함된 항체 panel을 사용할 수 있습니다.9
- 말초 혈구수 증가: 말초 혈구수가 증가하면 CD19, flow cytometry screen이 권장됩니다.
- Myelomonocytic lineages평가: Myelomonocytic lineages 평가에 CD13, CD33, CD16, CD10, CD11b, CD14, CD64가 포함됩니다.10
- 항체이상: 비정상적인 항체 수준이 관찰되는 경우 CD19 및 CD56 marker 를 포함하는 형질세포 계통 검사 panel이 사용됩니다.11 이러한 이상상태에는 arrested maturation, 다른 계통의 항원 발현(예:골수 세포상 CD19, CD7 림프 marker), 항원의 asynchronous 발현(CD34 blast에 CD15 성숙 호중구 marker발현), 정상적인 항원 발현의 비정상적 강도(T-ALL에서 CD3 가 낮게 발현됨, B-ALL에서 CD20가 낮게 발현되거나 발현되지 않음) 이 포함됩니다. 비정상적인 CD5 발현은 CLL에서 보이고 비정상적인 CD10 발현은 여포성 림프종에서 관찰될 수 있습니다.12
- 유세포 분석은 질병 모니터링 및 미세잔존질환 평가에 있어 매우 가치 있음이 증명되었습니다.8
